MTT法作為一種經典的細胞活力檢測技術，其原理基於活細胞線粒體中的琥珀酸脫氫酶將MTT檢測細胞增殖凋亡還原為藍紫色甲瓚結晶，通過酶標儀測定吸光度(OD值)間接反映細胞數量或活性。然而，實驗中OD值異常是常見問題，可能由以下原因導致：
1. 細胞接種密度不當
問題：細胞濃度過高會導致培養基營養耗竭，細胞進入G0期甚至死亡；濃度過低則OD值接近空白對照，誤差占比較大。
解決方案：預實驗需優化接種密度，並通過標準曲線確定線性範圍。
2. MTT試劑配製與保存錯誤
問題：
MTT檢測細胞增殖凋亡粉末未充分溶解或濾菌不完，可能導致沉澱殘留幹擾吸光度；反複凍融或保存不當會使試劑失效，呈現灰綠色。
解決方案：現用現配較佳，若需保存，分裝為小劑量於20℃避光保存，避免反複凍融。使用時確保MTT溶液為黃色澄清狀，若變色則立即棄用。
3. 邊緣效應與蒸發影響
問題：96孔板邊緣孔因水分蒸發快、氣體交換不均，易出現OD值偏高或偏低。
解決方案：邊緣32孔填充無菌PBS，中間孔用於實驗；加樣時避免氣泡，操作盡量快速以減少蒸發差異。
4. 藥物與MTT直接反應
問題：具有氧化還原性的藥物(如維生素C、穀胱甘肽)會直接還原MTT生成棕褐色沉澱，導致假陽性結果。
解決方案：加藥前用PBS清洗細胞2~3次去除殘留藥物，或改用CCK8法避免幹擾。
5. DMSO溶解不完
問題：甲瓚結晶未充分溶解會導致吸光度偏低且數據波動大。懸浮細胞離心後吸上清時可能誤吸結晶，貼壁細胞傾斜角度不足也會殘留結晶。
解決方案：貼壁細胞可傾斜30°緩慢吸液，懸浮細胞需離心後吸上清；DMSO溶解後37℃孵育10~20min並振蕩10min，確保結晶溶解。
6. 汙染與操作失誤
問題：細菌或真菌汙染會消耗營養並改變培養基pH，導致OD值異常升高；加MTT後立即變藍黑色提示汙染。此外，移液器精度不足或複孔設置過少(<3個)也會增加誤差。
解決方案：實驗前鏡檢確認無汙染；使用校準過的移液器，關鍵步驟重複3~5個複孔；調零孔與對照孔需嚴格設置以排除培養基和溶劑幹擾。
總結
MTT檢測細胞增殖凋亡實驗的可靠性依賴於細節把控。若OD值異常，需從細胞狀態、試劑質量、操作規範三方麵排查。對於特殊藥物或敏感細胞係，建議結合ATP測定法、LDH法等交叉驗證，以提高結果準確性。
